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400-830-9659

  • 多糖多酚植物總RNA提取試劑盒 (ABC3659)
多糖多酚植物總RNA提取試劑盒 (ABC3659)
價(jià)格:1571.0

產(chǎn)地:ABC

貨號(hào):ABC3659

規(guī)格:50T

備注:1.安全無毒,不含苯酚、氯仿等有機(jī)試劑
          2.可快速提取高純度RNA
          3.可有效的去除植物組織中的多糖、多酚、多脂等雜質(zhì)

  • 多糖多酚植物總RNA提取試劑盒 (ABC3659)
產(chǎn)品簡(jiǎn)介

      本試劑盒采用特殊的裂解緩沖體系與硅膠膜結(jié)合的純化方式,能夠快速地從小于100 mg的植物組織中提取總RNA,并有效的去除植物組織中的多糖、多酚、多脂等雜質(zhì),無需苯酚、氯仿等有機(jī)試劑。提取的高純度RNA,可直接用于RT-PCR、RT-qPCR、Northern雜交、cDNA文庫構(gòu)建、微陣列分析等各種分子生物學(xué)實(shí)驗(yàn)。

儲(chǔ)存與運(yùn)輸

      DNase冰袋(wet ice)運(yùn)輸,-20℃保存;其余試劑常溫運(yùn)輸,常溫儲(chǔ)存;有效期12個(gè)月。

使用前須知(請(qǐng)仔細(xì)閱讀)

1. 采集的樣本應(yīng)立刻提取RNA或于-80℃保存,否則會(huì)導(dǎo)致提取的RNA的產(chǎn)量與質(zhì)量下降。

2. Buffer PRL如有沉淀現(xiàn)象,請(qǐng)于37℃加熱溶解,待恢復(fù)至室溫后使用。

3. 使用前請(qǐng)?jiān)贐uffer PRL中加入β-巰基乙醇,使終濃度為2%,即1 mL的Buffer PRL中加入20 μL的β-巰基乙醇。此裂解液最好現(xiàn)配現(xiàn)用,加入β-巰基乙醇后室溫可放置1個(gè)月。

4. 使用前請(qǐng)向Buffer RW1和Buffer RW2中加入指定量(見瓶身)的無水乙醇。

5. 使用研磨儀研磨組織時(shí),將研磨儀提前預(yù)冷。

操作步驟

1. 植物組織樣本裂解:

a. (推薦)取新鮮或超低溫凍存的植物組織50-100 mg,迅速轉(zhuǎn)移到裝有2-3顆3 mm的研磨珠(推薦ABC0221-150G)并用液氮預(yù)冷的2.0 mL RNase-free研磨管(推薦ABC-200-M)中,將研磨管置于研磨儀(推薦ABC901001)上(放置研磨管前將適配器于液氮中迅速預(yù)冷)進(jìn)行研磨,直至研磨成粉末狀(如果樣本沒有完全研磨成粉末狀,會(huì)影響RNA的收率和質(zhì)量)。然后加入500 μL Buffer PRL,使用移液器吹打至樣本與Buffer PRL充分混合,室溫放置5 min。

b. 取新鮮或超低溫凍存的植物組織50-100 mg,迅速轉(zhuǎn)移到用液氮預(yù)冷的1.5 mL RNase-free離心管中,加入液氮,用研杵研磨組織,其間不斷加入液氮,直至研磨成粉末狀(如果樣本沒有完全研磨成粉末狀,會(huì)影響RNA的收率和質(zhì)量)。然后加入500 μL Buffer PRL,使用移液器吹打至樣本與Buffer PRL充分混合,室溫放置5 min。

c. 取新鮮或超低溫凍存的植物組織50-100 mg,迅速轉(zhuǎn)移到用液氮預(yù)冷的研缽中,加入液氮,用研杵研磨組織,其間不斷加入液氮,直至研磨成粉末狀(如果樣本沒有完全研磨成粉末狀,會(huì)影響RNA的收率和質(zhì)量)。然后將研磨成粉末的樣本加入到含有500 μL Buffer PRL的1.5 mL RNase-free離心管中,使用移液器吹打至樣本與Buffer PRL充分混合,室溫放置5 min。

2. 12,000 rpm,4℃離心5 min,將上清液轉(zhuǎn)移至一新的RNase-free離心管中,盡量不要吸取沉淀;

3. 向離心管中加入與上清液等體積的無水乙醇,上下顛倒混勻;

4. 將上述混合液轉(zhuǎn)移至RNA Spin Column(含Collection Tube)中,每次加入量不超過600 μL,如果超過600 μL可分批加入;

5. 12,000 rpm離心30 s,棄掉濾液。將RNA Spin Column重新放回Collection Tube中;

6. 向RNA Spin Column中加入500 μL Buffer RW1,12,000 rpm離心30 s,棄掉廢液;

7. 向RNA Spin Column中加入600 μL Buffer RW2(請(qǐng)沿RNA Spin Column管壁加入Buffer RW2,有助于沖洗管壁上殘留的鹽分),12,000 rpm離心30 s,棄掉廢液;

8. DNase反應(yīng)液配制:取5 μL 10×DNase Buffer,5 μL DNase,40 μL RNase-free Water于一新的RNase-free的1.5 mL RNase-Free離心管中混勻;

9. 向RNA Spin Column中央加入50 μL DNase反應(yīng)液,室溫靜置15 min;

10. 向RNA Spin Column中加入500 μL Buffer RW2,12,000 rpm離心30 s,棄掉廢液;

11. 重復(fù)操作步驟10;

12. 將RNA Spin Column放入Collection Tube中,12,000 rpm離心2 min;

13. 將RNA Spin Column置于一新的RNase-Free的1.5 mL的離心管中,室溫放置3-5 min,使RNA Spin Column殘留的乙醇完全揮發(fā);

14. 向RNA Spin Column的膜中央加入50-100 μL RNase-free Water,室溫放置5 min,12,000 rpm離心2 min,收集RNA。若要得到更高濃度的RNA,也可以將第一次的洗脫液重新加回至RNA Spin Column中,室溫靜置5 min,12,000 rpm離心2 min,再次收集RNA。

注意事項(xiàng)

1. 操作時(shí)請(qǐng)穿實(shí)驗(yàn)服,并佩戴一次性手套。

2. 應(yīng)使用無RNase的塑料制品和槍頭,避免交叉污染。

3. 應(yīng)使用RNA操作專用實(shí)驗(yàn)臺(tái)與電泳設(shè)備,并且在操作過程中佩戴口罩,防止所用器皿與試劑受到RNase的污染。

4. 如果在實(shí)驗(yàn)室以外的地方采集植物樣本,需將樣本置于攜帶的液氮或干冰中,避免影響提取的RNA的得率與質(zhì)量。

附表:

本試劑盒對(duì)多種植物樣本的RNA提取量見下表,RNA的提取量和植物的種類、部位、新鮮程度以及生長(zhǎng)狀態(tài)有關(guān),下表僅供參考。

樣品種類 樣品名稱 RNA得率
果實(shí) 沃柑 1-2 μg/50 mg
香蕉 2-3 μg/50 mg
蘋果 1-2 μg/50 mg
塊莖 馬鈴薯 10-15 μg/50 mg
紫薯 4-5 μg/50 mg
種子 花生種子 20-25 μg/50 mg
玉米種子 10-15 μg/50 mg

本產(chǎn)品僅供科研用途,不用于臨床診斷!

(產(chǎn)品包裝升級(jí)中,以實(shí)物為準(zhǔn)。)

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